糖基化客户文章 | 细胞内GlcNAc修饰的Y5 RNA:从成像到定量分析的全新范式

2026-07-17

 

 

标题

Identification and quantification of intracellular N-acetylglucosamine modified glycoRNAs

DOI】10.1038/s41467-026-72909-4

【发表时间】2026年4月24日(在线)

【单位】南京大学化学化工学院,生命分析化学国家重点实验室

【关键词】GlycoRNA、N-乙酰葡萄糖胺(GlcNAc)、FRET成像、细胞内RNA修饰、GlcISH-PLA、Y5 RNA、质谱分析、单细胞定量

【表观生物提供】glycoRNA-seq

SUMMER

研究背景与核心发现 

 

 

GlycoRNA是近年来糖生物学领域一项令人振奋的新发现。2021年,Flynn等首次报道了细胞表面存在携带N-聚糖的小非编码RNA,打破了“糖基化仅发生于蛋白质和脂质”的传统认知。然而,glycoRNA的研究仍面临诸多未解之谜:除了细胞表面,细胞内是否存在glycoRNA?除了唾液酸化N-聚糖,是否存在其他类型的糖基化修饰?glycoRNA在细胞内的分布和功能如何?

针对这些关键科学问题,南京大学鞠熀先教授团队设计了一套从“发现”到“验证”再到“定量”的全新研究范式。该研究首次证实了细胞内Y5 RNA携带N-乙酰葡萄糖胺(GlcNAc)单糖修饰,且主要分布于细胞核中。通过FRET成像、磁珠捕获、凝胶电泳、质谱分析和原位邻近连接分析(GlcISH-PLA)等多种技术手段,研究团队从多个维度验证了这一发现,并在单细胞、单分子水平上实现了GlcNAc-Y5 RNA的精准定量。

 

研究技术路线

研究团队设计了五层次递进式研究策略:

  • FRET成像发现:利用代谢标记(Ac₄GlcNAz)结合点击化学,将荧光受体(Cy3)标记到GlcNAc上,同时用FAM标记的DNA探针识别Y5 RNA,通过FRET信号初步证实GlcNAc-Y5 RNA的存在及其核内分布。

  • 磁珠捕获验证:设计生物素化捕获探针(Cap-Y5),通过链霉亲和素磁珠特异性富集细胞内Y5 RNA,结合DBCO-FAM点击标记,验证GlcNAc修饰的存在。

  • 酶学性质解析:利用GlcNAcase、O-糖苷酶和PNGase F等工具酶,结合PAGE分析和FRET成像,鉴定修饰类型为GlcNAc单糖而非复杂N-聚糖或O-聚糖。

  • 质谱结构确认:通过MALDI-TOF和高分辨Orbitrap质谱,鉴定GlcNAc-核糖核苷酸缀合物的特征分子离子峰(m/z 537.48),并利用Ac₄GlcNAz代谢标记产生的质量漂移进一步确认。

  • 原位精准定量:开发GlcISH-PLA方法,结合STED超分辨成像,首次实现单细胞水平GlcNAc-Y5 RNA的绝对定量(例如,HeLa细胞约12个信号点/细胞)。

 

主要研究发现

一、FRET成像揭示细胞内GlcNAc-Y5 RNA的存在与核内分布

研究团队首先构建了FRET成像系统(图1)。将HeLa细胞与Ac₄GlcNAz或Ac₄ManNAz共孵育进行代谢标记,经RNase处理彻底去除细胞表面RNA干扰后,利用DBCO-Cy3标记含叠氮的糖基,FAM-DNA探针(Com-Y5-1)识别Y5 RNA。结果显示,Ac₄GlcNAz标记的细胞表现出明显的FRET信号(FAM→Cy3),而Ac₄ManNAz标记组仅显示微弱的Cy3荧光且无FRET信号,表明细胞内Y5 RNA携带GlcNAc修饰而非唾液酸。

 

Y5 RNA敲除实验和GlcNAc合成抑制剂(DON)处理实验进一步确认了FRET信号的特异性。有趣的是,当使用FAM标记位置不同的Com-Y5-2至Com-Y5-8探针时,仅Com-Y5-1和Com-Y5-5(FAM标记位置相近)产生强FRET信号,说明GlcNAc修饰位点位于Y5 RNA的特定区域。

通过ER-Red、Golgi-Red和Hoechst 33342共定位分析(图2),研究团队发现GlcNAc-Y5 RNA主要分布于细胞核(Pearson系数0.872),而在内质网(0.328)和高尔基体(0.465)中的分布较低。

 

二、磁珠捕获策略验证GlcNAc-Y5 RNA

研究团队设计了生物素化的Cap-Y5探针,通过链霉亲和素磁珠从总RNA中特异性捕获Y5 RNA(图3)。CLSM成像显示,从Ac₄GlcNAz标记细胞提取的携带Y5 RNA的磁珠经DBCO-FAM标记后呈现强FAM荧光,而从未标记或Ac₄ManNAz标记细胞捕获的磁珠样品则无信号。PAGE分析显示,细胞内来源的Y5 RNA迁移速率显著慢于合成Y5 RNA(Syn-Y5),说明其携带额外修饰基团。该现象在HaCaT、MCF-7和MCF-10A细胞中均得到验证。

 

三、酶学鉴定确认GlcNAc单糖修饰

利用GlcNAcase、O-糖苷酶和PNGase F三种糖苷酶分别处理标记细胞(图4),FRET成像显示仅GlcNAcase处理组FRET信号显著消失,FAM信号不受影响;O-糖苷酶和PNGase F处理组FRET信号无明显变化。PAGE分析进一步证实,GlcNAcase处理使Y5 RNA的迁移速率加快至接近Syn-Y5水平,且荧光电泳的DBCO-FAM荧光信号消失。这些结果充分证明Y5 RNA携带的是GlcNAc单糖,而非N-聚糖或O-聚糖。

 

四、Y3/Y4 RNA选择性:GlcNAc修饰并非普适

为探究GlcNAc修饰是否为Y RNAs家族的普遍特征,研究团队分别针对Y3和Y4 RNA设计了Com-Y3-1和Com-Y4-1探针。FRET成像显示,Ac₄GlcNAz标记的细胞中Y3和Y4 RNA虽可被有效识别(FAM信号明显),但均无FRET信号(图5)。

 

磁珠捕获结合PAGE分析也证实,Y3和Y4 RNA无GlcNAc修饰。RNA测序进一步揭示,许多其他RNA(包括tRNA衍生小RNA、snoRNA和特定microRNA)同样携带GlcNAc修饰(补充图36),提示GlcNAc修饰具有广泛的RNA靶标选择性。

五、质谱分析确认GlcNAc-核糖核苷酸缀合物

通过MALDI-TOF和高分辨Orbitrap质谱分析(图6),RNase处理后的细胞内Y5 RNA在m/z 537.48处出现特征峰,而Syn-Y5中无此峰。Ac₄GlcNAz代谢标记使该峰移至m/z 578.48(质量偏移+41 Da,对应叠氮基团),而Ac₄ManNAz标记无此偏移,排除唾液酸修饰的可能。GlcNAcase处理使m/z 537.48峰消失,进一步确证其为GlcNAc-核糖核苷酸缀合物。MS/MS分析显示m/z 396.4的碎片峰,提示该缀合物包含AMP或其衍生物。

 

六、GlcISH-PLA实现单细胞精准定量

研究团队开发了GlcISH-PLA方法(图7),结合STED超分辨成像,对GlcNAc-Y5 RNA进行单细胞绝对定量。该方法利用双探针同时识别Y5 RNA和代谢标记的GlcNAz,通过邻近连接触发滚环扩增(RCA),每个靶标分子产生一个荧光扩增子(RCP),实现“一靶标一扩增子”的绝对定量。

 

定量结果显示,HeLa细胞中GlcNAc-Y5 RNA约为12.26个信号点/细胞;HaCaT细胞约19.54个;MCF-7约11.55个;MCF-10A约15.43个。BAG(O-GlcNAc转移酶抑制剂)和OSMI-1处理可显著降低扩增子数量(分别降至0.59和3.4个/细胞),证实GlcNAc修饰依赖OGT相关通路。蛋白酶K预处理不改变定量结果(12.05 vs 12.26个/细胞),排除了GlcNAc修饰蛋白产生假阳性信号的可能。

 

研究意义与机制模型

该研究首次系统性地揭示了细胞内GlcNAc修饰的glycoRNA的存在、分布、化学本质和精准定量,建立了从“发现”到“验证”到“定量”的完整研究范式。核心机制模型如下:

  • 修饰类型:Y5 RNA携带GlcNAc单糖修饰(非N-聚糖或O-聚糖)

  • 亚细胞定位:主要分布于细胞核

  • 修饰位点:Y5 RNA特定区域靠近Com-Y5-1/Com-Y5-5识别位点

  • 化学本质:GlcNAc通过共价键连接至核糖核苷酸,形成m/z 537.48特征离子

  • 定量特征:HeLa细胞约12个信号点/细胞

  • 修饰选择性:GlcNAc修饰具有RNA种类特异性(Y5有,Y3/Y4无)

  • 生物合成依赖:OGT相关通路参与GlcNAc向RNA的转移

 

这一发现拓展了glycoRNA的分布边界——从细胞表面拓展至细胞核内,揭示了GlcNAc单糖修饰这一新型RNA修饰形式的存在,为理解RNA糖基化的生物学功能开辟了新方向。研究团队建立的FRET成像平台、磁珠捕获策略和GlcISH-PLA定量方法,为glycoRNA领域的进一步探索提供了系统性的技术工具箱。

 

作者信息

 

南京大学生命分析化学国家重点实验室主任鞠熀先教授、南京大学化学化工学院陈云龙副教授为该文章的通讯作者。南京大学生命分析化学国家重点实验室任艺为该文章的第一作者。

 


 

- - - 推荐阅读 - - -