BD单细胞转录组测序 | 新一代OMICS-One™ WTA Next
表观生物BD单细胞转录组测序服务,采用BD Rhapsody™最新一代BD OMICS-One™ WTA Next试剂盒,在单细胞平台上实现了全转录组分析(WTA)性能的全面革新。相较旧版WTA试剂盒,中位UMI检测数、中位基因数、基因检出量都大幅提升。其无偏差覆盖整个转录组的特性,显著增强了对低丰度稀有转录本的捕获能力,同时线粒体背景信号降低超过70%,有效提升了数据信噪比与分析效率
BD单细胞测序平台采用微孔法进行捕获,将单细胞悬液和条形码磁珠加载到蜂窝状微孔板中,大部分微孔容纳“1细胞+1磁珠”进行配对。细胞裂解,磁珠捕获mRNA,回收磁珠后合成cDNA。经PCR扩增后构建文库,即可上机测序

cr:BD Rhapsody™
检出数可达3000+基因/细胞。以PBMC为例,相较旧版WTA,WTA Next的中位UMI检测数提升120%,中位基因数提升67%

转录组+单细胞表观组
与BD单细胞ATAC-seq联合分析,中位基因数提升156%。在混样检测中,中位基因数提升126%
转录组+免疫组库
与BD TCR/BCR联合分析,中位基因数提升81%
转录组+蛋白组
与CITE-seq联合分析,中位基因数提升38%

与旧版WTA相比,WTA Next线粒体背景信号降低70%以上(重复实验数据均抽样至每个细胞15k原始测序读数进行标准化对比,以排除干扰因素)。有效提高了测序数据的信噪比和可用率

同一实验数据显示,新鲜样本、24小时及72小时保存样本的中位UMI数和基因数回收效率高度一致。

经冷冻保存冻处理的样本,WTA Next依然保持与新鲜样本等效的检测性能。适配研究周期延长、开展回顾性分析等场景。

不同操作者使用同一供体来源的冷冻PBMC样本分别进行实验,评估WTA Next试剂盒的重复性。结果显示,在每个细胞25k测序深度下,两名操作者获得的中位UMI数和中位基因数高度一致(R²=1.0),表明操作者间重复性优异,该试剂盒性能不受操作者个体技术差异影响。

在100倍细胞通量范围内(1000-10w个细胞/通道)保持稳定的检测性能



分析条目:
标准分析
1. 原始数据质控与低质量细胞过滤
2. 线粒体比例、基因数及UMI数质控评估
3. 多样本整合与批次效应校正
4. 降维聚类与细胞异质性分析
5. 细胞群比例统计与样本分布分析
6. Marker基因识别与表达特征分析
7. 基于Marker和参考数据库的细胞类型注释
8. 不同细胞亚群及实验组间差异表达分析
9. 细胞状态打分与功能状态评估
高级分析
1. 细胞轨迹推断与拟时序分析
2. 转录因子活性与调控网络分析
3. 细胞通讯与配体受体互作分析
4. 差异基因 GO/KEGG 功能富集分析
5. 特定细胞亚群功能特征挖掘分析
个性化分析(评估收费)
1. 多组学联合整合分析
2. 特定通路、目标基因与机制定制研究
分析示例:








1. Mol Cancer:Ex vivo modelling of human colorectal cancer liver metastasis by normothermic machine perfusion【1】

这项研究将常温机械灌注技术应用于6例CRLM患者的切除/移植肝脏标本,建立了一种新型离体肿瘤模型,证明该模型能在体外长时间(约41小时,最长144小时)保持肿瘤组织活力、保留肿瘤表型特征及微环境结构。研究还发现,肿瘤相关髓系细胞在灌注期间持续存在,受TME局部信号驱动,与患者不良预后显著相关。
研究方法:对灌注前(T0)和灌注后(T1)的肿瘤及癌旁组织进行连续取样,综合运用单细胞RNA测序、空间转录组、多重免疫荧光、流式细胞术及高分辨率呼吸测定等多组学技术,从细胞组成、转录组特征、空间分布和功能通路等多个维度全面评估模型的保真性。
BD单细胞转录组的应用:对6例患者的肿瘤和癌旁组织、两个时间点(T0/T1)共获得75,075个高质量细胞。应用思路上,首先构建细胞图谱鉴定14种细胞类型,再通过iCMS分型和InferCNV验证肿瘤细胞特征,然后利用通路推断和差异基因分析解析微环境功能,最后通过T0与T1的纵向对比追踪灌注对细胞状态的动态影响,并结合RNA velocity分析髓系细胞分化轨迹,最终通过配体-受体通讯分析和TCGA生存验证,揭示肿瘤相关髓系细胞的持续存在机制及其临床意义。

2. Nat Immunol:PD-1 receptor deficiency enhances CD30+ Treg cell function in melanoma【2】
Treg细胞缺失PD-1后,不会功能减弱,反而通过代偿性上调CD30等共抑制受体增强免疫抑制功能,在肿瘤微环境中促进肿瘤生长。机制上,PD-1缺失增强STAT5磷酸化,进而转录激活CD30表达。在黑色素瘤患者中,抗PD-1治疗后Treg中CD30显著上调,且与多种癌症不良预后相关。
研究方法:使用Treg特异性PD-1条件敲除小鼠、B16黑色素瘤模型、过继转移实验验证体内功能;流式细胞术、RT-qPCR、磷酸化STAT5检测及ChIP-seq数据挖掘解析分子机制;抗CD30L抗体阻断实验验证通路功能;人类患者PBMC体外实验及公开数据集分析完成临床转化验证。
单细胞测序样本设置与应用思路
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鼠源TIL:取荷瘤第14天WT与 Pd1⁻/⁻ 小鼠肿瘤浸润淋巴细胞,BD scRNA-seq建库,通过差异基因分析发现CD30上调,结合GSEA、CellChat通讯分析及Monocle2拟时序分析,鉴定PD-1缺陷Treg的5种分化状态及TNF信号主导的新通讯模式。
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人源PBMC:纳入健康对照与IV期黑色素瘤患者,BD scRNA-seq联合AbSeq蛋白检测,结合公开GEO数据集比较抗PD-1治疗应答者与非应答者Treg中CD30表达差异。
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CosMx空间转录组:在组织切片层面可视化Treg亚群空间分布及细胞互作,与scRNA-seq结果形成空间层面交叉验证。

参考文献:
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Trebo M, Maurer T, Krendl FJ, et al. Ex vivo modelling of human colorectal cancer liver metastasis by normothermic machine perfusion. Mol Cancer. 2025;24(1):264. Published 2025 Oct 21.
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Lim JX, McTaggart T, Jung SK, et al. PD-1 receptor deficiency enhances CD30+ Treg cell function in melanoma. Nat Immunol. 2025;26(7):1074-1086.
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